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免疫半月谈(1-4期)

第 1 期

第 2 期

第 3 期

第 4 期

  肿瘤免疫治疗在早期经历了漫漫上百年的探索。随着1980s年代晚期T细胞活化的第⼆信号即协同刺激信号(costimulatory signal)的发现1,及随后1990s年代T细胞活化的协同抑制信号(coinhibitory signal)即免疫检查点(immune checkpoint)的揭示2,为肿瘤免疫治疗带来了创新思路和曙光,肿瘤免疫治疗进⼊了快速蓬勃发展期3,4,短短数年间多种anti-PD-1/PD-L1单抗相继获批用于多个瘤种的治疗。肿瘤免疫循环(图1)起始于肿瘤特异性抗原释放;树突状细胞接触肿瘤抗原,自身成熟活化,然后呈递肿瘤抗原⾄位于淋巴结内的初始T细胞,后者活化成为效应T细胞后转运至肿瘤组织中起到杀伤作⽤5。而肿瘤可通过多种机制改变其所在微环境,实现免疫逃逸,PD-1/PD-L1免疫检查点则是其中重要的⼀环2

图1.肿瘤免疫循环
 

  T细胞除了受到PD-1/PD-L1检查点影响外,其激活还受到共刺激受体提供的正负信号的平衡进⾏调节(图2)。这些表⾯蛋⽩通常是 TNF 受体或 B7 超家族的成员。针对激活共刺激分⼦(如OX40)的激动性抗体和针对负共刺激分⼦(如CTLA、TIM-3、LAG-3)的阻断抗体可增强T细胞以促进肿瘤破坏3

图2. T细胞上可供免疫治疗抗体作⽤的靶点

PD-1/PD-L1免疫检查点作用机制

  活化的T细胞通过T细胞受体(T-cell receptor,TCR)识别主要组织相容性复合物(MHC)分子所呈现的多肽,从而起到杀伤肿瘤细胞的作⽤。PD-1(Programmed Cell Death-1)主要表达于活化的T细胞,通过与其配体PD-L1和PD-L2结合,起到抑制T细胞活化的作⽤。在正常机体中,PD-L1低表达于抗原递呈细胞(APCs)、以及非造血细胞如血管内皮细胞、胰岛细胞以及免疫豁免部位(如胎盘、睾丸和眼睛)6,然而当肿瘤细胞⻓时间暴露于由局部激活的T细胞释放的干扰素γ和其他细胞因⼦的环境时,会出现PD-L1的表达上调并导致效应T细胞的耐受从而产⽣“刹⻋”作⽤。而免疫检查点抑制剂PD-1/PD-L1单抗则是通过解除该作用使T细胞恢复活性,从而起到抑制肿瘤的作⽤。
  PD-1与PD-L1的结合并不是⼀⼀对应的(图3),PD-1可结合PDL1和PD-L2,PD-L1可结合PD-1和CD80,⽽PD-L2可结合PD-1和RGMb,这样多受体/配体结合的机制,也为PD-1/PD-L1药物疗效/安全性的差异奠定了基础2

图3. PD-1信号通路与结合对象的多样性

PD-1/PD-L1抑制剂安全性差异

  PD-1/PD-L1抑制剂打破⾃⾝免疫的外周耐受会导致免疫系统攻击正常组织和器官,产⽣免疫相关不良事件(irAE)。与PD-1抗体相⽐,PD-L1抗体治疗所导致的irAEs发⽣率更低7。尽管PD-1/PD-L1抑制剂均主要均通过阻断PD-1/PD-L1通路逆转T细胞耗竭,但PD-1抑制剂会阻断PD-1/PD-L2通路,PD-L2作为PD-1信号通路上的重要配体,其主要⽣物学特性是与PD-1结合,从⽽发挥抑制免疫细胞功能的作⽤,除此之外,PD-L2可与排斥性导向分⼦b(RGMb)结合,活化⻣形成蛋⽩受体通路,促进T细胞的功能活化8。在PD-1单抗的影响下,PD-L2与受体RGMb结合增加,可能影响免疫系统稳态,增加不良反应发⽣率9。以下这项研究发现,PD-1抑制剂可增加间质性肺炎的发⽣,因为抗PD-1抗体阻断PD-1与PD-L2结合后,⼤量PD-L2与巨噬细胞上的RGMb结合,肺定居记忆性T细胞⼤量扩增,对⾃⾝抗原的免疫耐受降低(图4)10

图4. PD-1单抗可导致PD-L2与RGMb结合增加
 

  综上所述,PD-1/PD-L1免疫治疗通过免疫检查点的抑制起到 “去刹⻋” 作⽤从⽽抑制肿瘤,⽽不同的PD-1 与PD-L1类单抗由于可以影响到PD-L2与RGMb的结合,其安全性也有所差异。
 

辉瑞医学部肺癌团队

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有效期至2024年3月2日

  在上⼀谈中,我们讨论了PD-1/PD-L1免疫治疗的作⽤机制。然⽽⽆论是久热不⽌的PD-1和 PD-L1的研究,还是针对TIGIT、LAG3、TIM-3等靶点的探索,均是围绕如何恢复T细胞功能来进⾏的,即如何提⾼机体的获得性免疫。⽽固有免疫在肿瘤免疫治疗中的作⽤却⻓期没有得到体现。事实上,在整个肿瘤免疫微环境的多种浸润免疫细胞中,巨噬细胞占主要成分1,以巨噬细胞为代表的固有免疫在肿瘤免疫治疗中的作⽤仍有待研究和应⽤。

巨噬细胞与肿瘤免疫

  巨噬细胞源⾃于循环单核细胞,作为⼀种先天免疫细胞,存在于所有组织中并参与多种病理活动。在肿瘤中,巨噬细胞扮演着双重⻆⾊:(1)⼀⽅⾯,巨噬细胞可能通过基质重塑,分泌⽣⻓因⼦和免疫抑制细胞因⼦,⽀持⾎管⽣成从⽽促进肿瘤⽣⻓和扩散,其浸润程度与许多类型 的癌症不良预后相关;(2)另⼀⽅⾯,通过杀伤肿瘤细胞和病原体,从⽽抑制肿瘤的发⽣发展2-4。除此之外,巨噬细胞不仅表达出所有类别 Fcγ 受体,⽽且能通过抗体依赖性细胞吞噬作⽤ (ADCP)来杀伤肿瘤细胞5-6,在许多抗体治疗效应中发挥着重要作⽤。

图1. 单抗诱导巨噬细胞杀伤效应⽰意图


  I 和 II,直接作⽤包括阻断⽣⻓受体和诱导细胞凋亡 (I),⽽ CDC 在 C1q 与单克隆抗体介导的肿瘤细胞结合后被诱导(II)。III 和 IV,将 免疫效应细胞与肿瘤细胞连接,导致 ADCC (III)或 ADCP (IV)。

  因此如何利⽤好巨噬细胞,使其更好地发挥抗肿瘤作⽤,对肿瘤的免疫治疗来说具有重⼤的意义。然⽽相⽐NK细胞或外周⾎中的其他⽩细胞⽽⾔,巨噬细胞的研究难度更⼤:⾸先巨噬细胞不在⾎液中循环,不便⼤量纯化,需要在⼈⾎清或⽣⻓因⼦(例如巨噬细胞集落刺激因⼦(M- CSF)存在下培养⼀周或更⻓时间,才能与循环单核细胞区别开来7;此外,巨噬细胞介导的细胞毒性主要通过吞噬作⽤,在技术上较难测定8,需要显微镜观察或流式细胞术来将细胞吞噬进⾏定量。铬释放测定法是测量抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC)的⾦标准,但该⽅法不⾜以 评估巨噬细胞的作⽤,因为巨噬细胞在吞噬作⽤后会保留放射性探针8,导致ADCP难以测量。由 于这些原因,巨噬细胞作为⼀种可靶向癌症的效应细胞仍有待进⼀步认知和应⽤。

PD-1/PD-L1免疫治疗与ADCP

  抗体依赖性细胞介导的细胞吞噬作⽤(antibody-dependent cellular phagocytosis,ADCP)是巨噬细胞表⾯上的FcγR通过识别靶细胞上结合的抗体对靶细胞进⾏的吞噬作⽤。结合我们第⼀期免疫半⽉谈中所介绍的PD-1/PD-L1机制,PD-1单抗结合的是T细胞表⾯的PD-1蛋⽩,⽽ADCP的加⼊会使巨噬细胞清除T细胞,导致T细胞的消耗从⽽弱化抗肿瘤效应;PD-L1单抗结合的则是肿瘤细胞表⾯的PD-L1蛋⽩,在此基础上将PD-L1单抗的Fcγ段进⾏改造增加ADCP作⽤,可以在保护了T细胞的同时,使巨噬细胞也加⼊到肿瘤杀伤的⼯作中。

图2. Fc段改造后的的肿瘤结合抗体与巨噬细胞Fc受体结合并激活吞

巨噬细胞在NSCLC免疫治疗中的作用

  刺激巨噬细胞,恢复机体固有免疫的杀伤作⽤,可与获得性免疫反应的T细胞起到协同抗肿瘤效果。在肿瘤免疫微环境中,肿瘤相关巨噬细胞(TAM)可分为促炎 (M1) 或抗炎 (M2) 巨噬细胞两个亚型,在肿瘤的发⽣发展中起到不同的作⽤:M1巨噬细胞主要作⽤是杀死病原体和肿瘤细胞,⽽M2巨噬细胞主要作⽤是促进肿瘤的进展。巨噬细胞向M1型和M2型的极化具有可逆性和可调节性,并与肿瘤微环境密切相关,在⻓期肿瘤微环境的作⽤下,TAM主要表现为M2型,与肿瘤⽣⻓、发展、侵袭和转移密切相关。

  既往基础研究中,巨噬细胞对预后的影响或与其极化状态和浸润深度有关9-11。同时,寻找巨噬细胞⾼浸润总量患者群,也为探索药物⼲预的优势⼈群提供了可能性。基础研究揭⽰,肺鳞癌、EGFR野⽣型、有吸烟史的患者巨噬细胞浸润率⾼于肺腺癌、EGFR突变型和⾮吸烟患者。由于驱动基因阳性⽐例低,往往有吸烟史,肺鳞癌患者成为了关注的重点12

图3. 巨噬细胞与病理类型、EGFR状态、吸烟状态的相关性
 

  进⼀步研究显⽰,M2型巨噬细胞往往呈现PD- L1⾼表达,抑制T细胞的抗肿瘤活性,并抑制TAM的吞噬作⽤。PD-L1抑制剂可以将巨噬细胞从 M2 重新定向到 M1 表型13,表明肿瘤 PD-L1的封闭或改变了肿瘤免疫微环境进⽽逆转了巨噬细胞的极化。
  ⽬前,有许多增强巨噬细胞的免疫杀伤功能的治疗⽅法处于探索状态,包括探索新靶点和开发具有增强ADCP功能的抗体。作为肿瘤免疫治疗的重要效应细胞,针对巨噬细胞的研究可在未来给患者带来更好的⽣存获益。

 

辉瑞医学部肺癌团队

参考文献:Morrison C. Immuno-oncologists eye up macrophage targets. Nature reviews Drug discovery. 2016;15(6):373-4.Chen P, Huang Y, Bong R, Ding Y, Song N, Wang X, et al. Tumor-associated macrophages promote angiogenesis and melanoma growth via adrenomedullin in a paracrine and autocrine manner. Clinical cancer research : an official journal of the American Association for Cancer Research. 2011;17(23):7230-9.Lin EY, Li JF, Bricard G, Wang W, Deng Y, Sellers R, et al. Vascular endothelial growth factor restores delayed tumor progression in tumors depleted of macrophages. Mol Oncol. 2007;1(3):288-302.Kryczek I, Zou L, Rodriguez P, Zhu G, Wei S, Mottram P, et al. B7-H4 expression identifies a novel suppressive macrophage population in human ovarian carcinoma. The Journal of experimental medicine. 2006;203(4):871-81.Gül N, van Egmond M. Antibody-Dependent Phagocytosis of Tumor Cells by Macrophages: A Potent Effector Mechanism of Monoclonal Antibody Therapy of Cancer. Cancer Res. 2015;75(23):5008-13.Weiskopf K, Weissman IL. Macrophages are critical effectors of antibody therapies for cancer. MAbs. 2015;7(2):303-10.Johnson WD, Jr., Mei B, Cohn ZA. The separation, long-term cultivation, and maturation of the human monocyte. The Journal of experimental medicine. 1977;146(6):1613-26.Munn DH, Cheung NK. Phagocytosis of tumor cells by human monocytes cultured in recombinant macrophage colony-stimulating factor. The Journal of experimental medicine. 1990;172(1):231-7.Takanami I, Takeuchi K, Kodaira S. Tumor-associated macrophage infiltration in pulmonary adenocarcinoma: association with angiogenesis and poor prognosis. Oncology. 1999;57(2):138-42.Leek RD, Lewis CE, Whitehouse R, Greenall M, Clarke J, Harris AL. Association of macrophage infiltration with angiogenesis and prognosis in invasive breast carcinoma. Cancer Res. 1996;56(20):4625-9.Shimura S, Yang G, Ebara S, Wheeler TM, Frolov A, Thompson TC. Reduced infiltration of tumor-associated macrophages in human prostate cancer: association with cancer progression. Cancer Res. 2000;60(20):5857-61.Cao L, Che X, Qiu X, Li Z, Yang B, Wang S, et al. M2 macrophage infiltration into tumor islets leads to poor prognosis in non-small-cell lung cancer. Cancer Manag Res. 2019;11:6125-38.Dhupkar P, Gordon N, Stewart J, Kleinerman ES. Anti-PD-1 therapy redirects macrophages from an M2 to an M1 phenotype inducing regression of OS lung metastases. Cancer medicine. 2018;7(6):2654-64.
有效期至2025年9月12日

  非鳞NSCLC(其中以腺癌为主)是肺癌的主要亚型之一,约占肺癌患者总数的50-60%1,而其中约50%存在驱动基因突变如EGFR突变、ALK融合等2,这些患者可以通过靶向治疗获得较好的疗效,而一半以上的驱动基因阴性的非鳞NSCLC患者找不到有效的靶点,其治疗仍主要依赖化疗,其疗效并不理想。因此,该部分患者亟需新的治疗方式。

免疫治疗单药治疗非鳞NSCLC

  如我们在第一讲中所述,PD-1/PD-L1免疫检查点的存在,是肿瘤实现免疫逃逸的重要途径。通过解除“刹车”作用,PD-1/PD-L1抑制剂可恢复效应T细胞对肿瘤的杀伤功能。2015年,随着PD-1/PD-L1抑制剂为代表的免疫检查点抑制剂的兴起,NSCLC正式进入了免疫治疗时代。
  在NSCLC二线治疗获得成功后,免疫治疗开始了向一线治疗的进军:KEYNOTE024研究中帕博利珠单抗在PD-L1高表达(TPS>50%)的患者中疗效及生存期均显著优于化疗3,而根据2020 ESMO上所报道的5年生存结果,帕博利珠单抗5年OS率为31.9%,较单纯化疗的16.3%提升近1倍,显著延长了这部分患者的生存。2020年Impower110研究结果公布,阿替利珠单抗同样可在PD-L1高表达(TC/IC3)的患者中完胜化疗,填补了PD-L1单抗在NSCLC一线治疗的空白4

免疫联合化疗治疗非鳞NSCLC

  尽管免疫单药在NSCLC一线治疗中给PD-L1高表达的患者带来了获益,但PD- L1高表达的患者仅占全部患者的30%左右,仍有一半以上的患者无法获益于免疫单药。而针对这部分患者,免疫与其他治疗方案的联合提供了新的思路。免疫与化疗存在多种协同作用,化疗可以通过杀死肿瘤细胞,暴露肿瘤抗原,改变肿瘤微环境,从而便于PD-1/PD-L1抑制剂发挥更好的疗效5。化疗药物种类繁多,如培美曲塞、紫杉醇、铂类等等,而前期研究指出,非鳞NSCLC中培美曲塞可通过多种机制起到与免疫治疗的协同效应,基于这些理论基础,GEMSTONE-302对比了晚期NSCLC中Sugemalimab联合含铂双药化疗与单纯化疗,结果证实免疫联合化疗显著优于化疗组,达到了主要研究终点PFS与OS,且无论PD-L1表达水平如何,均可获益于免疫与化疗的联合方案,显著扩大了免疫治疗的覆盖群体6
  除Sugemalimab外,其他多个免疫检查点抑制剂也均在一线与化疗相联合的临床研究取得了佳绩。如KEYNOTE 189、RATIONAL-304、ORIENT-11等研究7-9,进一步增加了药物的可及性。

免疫联合抗血管治疗非鳞NSCLC

  既往研究指出,抗血管生成治疗可通过改善肿瘤免疫微环境,与免疫治疗起到协同作用。在此基础上,III期临床研究Impower150中的四药联合方案(阿替利珠单抗+贝伐珠单抗+卡铂+紫杉醇,ABCP)首次证实免疫治疗联合抗血管生成治疗和化疗模式一线治疗转移性非鳞NSCLC,PFS及OS均得到显著获益阳性结果10。TASUKI-52研究则将纳武利尤单抗联合贝伐珠单抗与含铂双药化疗,在PFS上显著优于未联合免疫组11。除此之外,口服抗血管生成TKI阿帕替尼与卡瑞利珠单抗的联合也初步证实了其抗肿瘤活性12

免疫联合免疫治疗非鳞NSCLC

  有越来越多的证据证明,PD-L1加上CTLA-4单抗能给晚期NSCLC带来更多的临床获益和生存延长。双免疫治疗联合的代表方案为CheckMate227中PD-1抑制剂纳武利尤单抗联合CTLA-4抑制剂伊匹单抗,在今年ASCO的大会上,该研究公布了3年随访数据,结果提示无论是PD-L1阳性(≥1%)或阴性(<1%),纳武利尤单抗3mg/kg(q2w)+低剂量伊匹木单抗1mg/kg(q6w)的一线治疗OS都优于传统化疗13。CheckMate9LA则是在上述方案的基础上联合了两周期化疗,即一线使用纳武利尤单抗+伊匹木单抗+2周期化疗 vs 常规4周期化疗治疗,结果显示,免疫联合组的中位OS显著优于化疗组,并基于此研究结果近期获得了FDA批准的NSCLC一线治疗适应证14。除此之外,POSEIDON研究也指出,度伐利尤单抗+Tremelimumab(CTLA-4单抗)+含铂双药化疗治疗晚期NSCLC的PFS显著优于化疗组15

  综上所述,免疫治疗的出现给晚期非鳞NSCLC的诊疗带来了重大影响,显著延长了患者的生存时间,而联合治疗则是增强疗效、扩大免疫治疗人群的重要方式。期待未来有更多的研究,可为该部分患者的最佳联合治疗方式提供新的证据,进一步延长生存获益。

辉瑞医学部肺癌团队

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有效期至2024年11月14日
肺癌
EM-CHN-non-0008 Expiration Date: 2025/5/17

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